Преимущества диагностики инфекций, передаваемых половым путем, методом полимеразной цепной реакции


Кровь из пальца - New! Вирусные гепатиты Real-time PCR - количественное определение при помощи ПЦР NASBA -точная диагностика хламидиоза Atopobium vaginae - новый возбудитель бактериального вагиноза Бактериальный вагиноз БИБЛИОТЕКА Анализы методом ПЦР ПЦР - теоретические основы Дозированная иммунотерапия в лечении хронических воспалительных заболеваний Профессиональный массаж в центре Ростова	Главная Достоверность ФОРУМ
Преимущества диагностики инфекций, передаваемых половым путем, методом полимеразной цепной реакции Гладкая Л.В., Крукович А.А. г. Брест Опубликовано в журнале "Медицинская панорама", № 8 за 2002 год, с. 30 Инфекции, передаваемые половым путем (ИППП), являются серьезной проблемой здравоохранения, что обусловлено их повсеместным распространением и значительным влиянием на уровень здоровья населения. Одним из наиболее эффективных методов диагностики ИППП является полимеразная цепная реакция (ПЦР), суть которой заключается в выявлении и многократном увеличении числа специфических фрагментов ДНК. ПЦР обладает следующими преимуществами: 1. Благодаря высокой чувствительности метод позволяет обнаруживать даже единичные клетки бактерий или вирусов. С помощью ПЦР можно диагностировать инфекционные заболевания в тех случаях, когда другие исследования (иммунологические, бактериологические, микроскопические) неинформативны. Чувствительность ПЦР составляет 10-100 клеток в пробе; иммунологических и микроскопических тестов - 10³-10⁵ клеток. 2. Высокая специфичность ПЦР обусловлена тем, что в исследуемом материале выявляется уникальный, характерный только для данного возбудителя фрагмент ДНК. Специфичность задается нуклеотидной последовательностью праймеров, что исключает ложные результаты в отличие от иммуноферментного анализа (ИФА), где нередки ошибки в связи с перекрестно-реагирующими агентами. 3. Прямое определение наличия возбудителей. Многие традиционные методы диагностики, например, ИФА, обнаруживают белки-маркеры, являющиеся продуктами жизнедеятельности микроорганизмов, что дает лишь опосредованное подтверждение инфекции. Выявление специфического участка ДНК возбудителя : помощью ПЦР прямо указывает на его присутствие. 4. Универсальность процедуры. Материалом для исследования служит ДНК возбудителя. Благодаря сходству химического состава нуклеиновых кислот всех организмов ПЦР может с успехом применяться для выявления практически всех возбудителей. При этом в одной пробе можно диагностировать сразу несколько инфекционных агентов. В качестве исследуемого материала могут использоваться слизь, моча, сперма, соскобы эпителиальных клеток, кровь, сыворотка, биоптаты. 5. Высокая скорость получения результата. Для постановки ПЦР не требуется выделения и выращивания возбудителя, что занимает много времени. Унифицированный метод обработки биоматериала и детекции продуктов реакции, автоматизация процесса амплификации позволяют произвести полный анализ за 5-6 часов. 5. Возможность диагностики хронических и латентных инфекций. Особенно эффективна ПЦР для выявления труднокультивируемых, не культивируемых и персистирующих микроорганизмов. Метод также очень информативен в отношении возбудителей с высокой антигенной изменчивостью и внутриклеточных паразитов. Благодаря своим достоинствам ПЦР нашла широкое применение для диагностики ИППП. Начиная с 1997 г. данный метод внедрен в централизованной бактериологической лаборатории Брестского облкожвендиспансера. Произведено 2850 исследований, из них на наличие хламидиоза -1232; уреаплазмоза - 720; микоплазмоза - 706; трихомониаза -192. С целью выявления последнего параллельно с ПЦР выполнялась микроскопия мазков. В тех случаях, когда по ее результатам не удавалось установить четкий диагноз (при наличии трихомоноподобных антигенных клеток), метод ПЦР оказывался наиболее эффективным. Для диагностики хламидийной инфекции наряду с ПЦР использовали иммунофлюоресцентную микроскопию, РИФ и ИФА. При невозможности получения адекватного результата, т. е. невыявлении антигенов к хламидиям (РИФ) или низком титре антител (ИФА), ПЦР-анализ позволял обнаружить возбудитель. Чувствительность ПЦР составила 85-95%; РИФ - 55-65%. ПЦР оказалась высокоэффективной и при диагностике микоплазменных инфекций. Параллельно производили бактериологическое исследование с культивированием биоматериала (выделение из цервикального и уретрального канала) на плотной питательной среде. В результате 120 параллельных анализов с помощью ПЦР выявлено 16 больных с уреаплазмозом и 5 с микоплазмозом; бактериологически - 8 и 2 соответственно. Особенно ценным преимуществом ПЦР является возможность идентификации Micoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum и Chlamidia trachomatis среди других видов и биоваров (патогенных или непатогенных) мико-, уреаплазм, хламидий благодаря обнаружению генома возбудителя. Таким образом, ПЦР-анализ, обладающий целым рядом преимуществ перед традиционными методами диагностики, позволяет с высокой точностью выявлять возбудители урогенитальных инфекций, что способствует более адекватному лечению.
Есть вопросы? Задай их на форуме

Преимущества диагностики инфекций, передаваемых половым путем, методом полимеразной цепной реакции

Гладкая Л.В., Крукович А.А. г. Брест

Опубликовано в журнале "Медицинская панорама", № 8 за 2002 год, с. 30

Инфекции, передаваемые половым путем (ИППП), являются серьезной проблемой здравоохранения, что обусловлено их повсеместным распространением и значительным влиянием на уровень здоровья населения.

Одним из наиболее эффективных методов диагностики ИППП является полимеразная цепная реакция (ПЦР), суть которой заключается в выявлении и многократном увеличении числа специфических фрагментов ДНК.

ПЦР обладает следующими преимуществами:

1. Благодаря высокой чувствительности метод позволяет обнаруживать даже единичные клетки бактерий или вирусов. С помощью ПЦР можно диагностировать инфекционные заболевания в тех случаях, когда другие исследования (иммунологические, бактериологические, микроскопические) неинформативны. Чувствительность ПЦР составляет 10-100 клеток в пробе; иммунологических и микроскопических тестов - 10³-10⁵ клеток.

2. Высокая специфичность ПЦР обусловлена тем, что в исследуемом материале выявляется уникальный, характерный только для данного возбудителя фрагмент ДНК. Специфичность задается нуклеотидной последовательностью праймеров, что исключает ложные результаты в отличие от иммуноферментного анализа (ИФА), где нередки ошибки в связи с перекрестно-реагирующими агентами.

3. Прямое определение наличия возбудителей. Многие традиционные методы диагностики, например, ИФА, обнаруживают белки-маркеры, являющиеся продуктами жизнедеятельности микроорганизмов, что дает лишь опосредованное подтверждение инфекции. Выявление специфического участка ДНК возбудителя : помощью ПЦР прямо указывает на его присутствие.
4. Универсальность процедуры. Материалом для исследования служит ДНК возбудителя. Благодаря сходству химического состава нуклеиновых кислот всех организмов ПЦР может с успехом применяться для выявления практически всех возбудителей. При этом в одной пробе можно диагностировать сразу несколько инфекционных агентов. В качестве исследуемого материала могут использоваться слизь, моча, сперма, соскобы эпителиальных клеток, кровь, сыворотка, биоптаты.
5. Высокая скорость получения результата. Для постановки ПЦР не требуется выделения и выращивания возбудителя, что занимает много времени. Унифицированный метод обработки биоматериала и детекции продуктов реакции, автоматизация процесса амплификации позволяют произвести полный анализ за 5-6 часов.
5. Возможность диагностики хронических и латентных инфекций. Особенно эффективна ПЦР для выявления труднокультивируемых, не культивируемых и персистирующих микроорганизмов. Метод также очень информативен в отношении возбудителей с высокой антигенной изменчивостью и внутриклеточных паразитов.

Благодаря своим достоинствам ПЦР нашла широкое применение для диагностики ИППП.

Начиная с 1997 г. данный метод внедрен в централизованной бактериологической лаборатории Брестского облкожвендиспансера. Произведено 2850 исследований, из них на наличие хламидиоза -1232; уреаплазмоза - 720; микоплазмоза - 706; трихомониаза -192. С целью выявления последнего параллельно с ПЦР выполнялась микроскопия мазков. В тех случаях, когда по ее результатам не удавалось установить четкий диагноз (при наличии трихомоноподобных антигенных клеток), метод ПЦР оказывался наиболее эффективным.

Для диагностики хламидийной инфекции наряду с ПЦР использовали иммунофлюоресцентную микроскопию, РИФ и ИФА. При невозможности получения адекватного результата, т. е. невыявлении антигенов к хламидиям (РИФ) или низком титре антител (ИФА), ПЦР-анализ позволял обнаружить возбудитель. Чувствительность ПЦР составила 85-95%; РИФ - 55-65%.

ПЦР оказалась высокоэффективной и при диагностике микоплазменных инфекций. Параллельно производили бактериологическое исследование с культивированием биоматериала (выделение из цервикального и уретрального канала) на плотной питательной среде. В результате 120 параллельных анализов с помощью ПЦР выявлено 16 больных с уреаплазмозом и 5 с микоплазмозом; бактериологически - 8 и 2 соответственно.

Особенно ценным преимуществом ПЦР является возможность идентификации Micoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum и Chlamidia trachomatis среди других видов и биоваров (патогенных или непатогенных) мико-, уреаплазм, хламидий благодаря обнаружению генома возбудителя.

Таким образом, ПЦР-анализ, обладающий целым рядом преимуществ перед традиционными методами диагностики, позволяет с высокой точностью выявлять возбудители урогенитальных инфекций, что способствует более адекватному лечению.

Есть вопросы? Задай их на форуме